| Project/Area Number |
22K05384
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| Research Category |
Grant-in-Aid for Scientific Research (C)
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| Allocation Type | Multi-year Fund |
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| Section | 一般 |
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| Review Section |
Basic Section 38020:Applied microbiology-related
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| Research Institution | Kyushu University |
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Principal Investigator |
益田 時光 九州大学, 農学研究院, 助教 (90778060)
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| Co-Investigator(Kenkyū-buntansha) |
本城 賢一 九州大学, 農学研究院, 准教授 (00264101)
宮本 敬久 九州大学, 農学研究院, 教授 (70190816)
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| Project Period (FY) |
2022-04-01 – 2026-03-31
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| Project Status |
Granted (Fiscal Year 2022)
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| Budget Amount *help |
¥4,160,000 (Direct Cost: ¥3,200,000、Indirect Cost: ¥960,000)
Fiscal Year 2025: ¥650,000 (Direct Cost: ¥500,000、Indirect Cost: ¥150,000)
Fiscal Year 2024: ¥1,170,000 (Direct Cost: ¥900,000、Indirect Cost: ¥270,000)
Fiscal Year 2023: ¥1,170,000 (Direct Cost: ¥900,000、Indirect Cost: ¥270,000)
Fiscal Year 2022: ¥1,170,000 (Direct Cost: ¥900,000、Indirect Cost: ¥270,000)
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| Keywords | バクテリオファージ / ゲノム編集 / CRISPR-Cas / leaderless bacteriocin / bacteriophage / tail fibers |
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| Outline of Research at the Start |
本研究では、食中毒細菌の制御を目的として、CRISPR -Casシステムに代表されるゲノム編集技術を用いたバクテリオファージ（以降ファージ）遺伝子改変技術の基盤の構築と改変ファージの応用を目指す。特に、ファージの宿主特異性を担うテイルファイバーについての改変や、宿主菌のゲノム中にファージゲノム情報が入り込んでしまう溶原化に関連する遺伝子を特定、取り除くことで安全性の高い溶菌ファージに変換することなどを目指す。また、宿主菌のファージ耐性化を防ぐための抗菌力強化のために、３）抗菌ペプチドリーダーレスバクテリオシン（LLB）産生ファージ（以降LLBファージ）の作製とその応用についての検討を行う。
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| Outline of Annual Research Achievements |
本研究では、食中毒細菌の制御を目的として、CRISPR -Casシステムに代表されるゲノム編集技術を用いたバクテリオファージ（以降ファージ）遺伝子改変技術の基盤の構築と改変ファージの応用を目指し、以下の研究を行う。ゲノム編集によるファージ特性の改変として、１）複数テールファイバー（以降TF）遺伝子を保持するファージ（マルチテールファイバーファージ：以降MTFファージ）における宿主特異性とTF遺伝子の関連性の解明とその応用、２）溶原化関連遺伝子群や毒性遺伝子をゲノム編集によって取り除き、有用な溶菌ファージへと特性を改変させることを目指す。また、ファージ耐性化を防ぐための抗菌力強化のために、３）抗菌ペプチドリーダーレスバクテリオシン（LLB）産生ファージ（以降LLBファージ）の作製とその応用についての検討を進めてきた。
初年度においては、当初の計画に沿って、大腸菌ファージECP52を用いてMTFファージと宿主特異性についての研究を進め、ECP 52が宿主の表面構造のうちLPS、特にインナーコア領域の構造を認識部位として宿主を認識しているということが明らかとなった。
溶菌ファージ化に関しては、黄色ブドウ球菌溶原性ファージPSARaにおいて、integrase遺伝子を含む４遺伝子を欠損させることで溶原性を著しく抑えることができることが明らかとなった。
また、LLB産生ファージについては、大腸菌ファージECP52および黄色ブドウ球菌ファージPSARaを用いて2種類のLLB、lacticinQまたはaureocinAを産生するLLBファージの作成を進めている。
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| Current Status of Research Progress |
Current Status of Research Progress
2: Research has progressed on the whole more than it was originally planned.
Reason
MTFファージに関しては、当初の予定通り、宿主表面構造のうちLPSや外膜タンパクOmpがECP52の認識部位として利用されていることなどを明らかにした。これらの標的関連遺伝子欠損宿主およびECP52においてレセプター認識部位の特定を目指し研究を進めている。具体的にはTF関連遺伝子の欠損ファージを作成し、宿主行きへの影響を調べる。
溶原ファージの溶菌ファージ化については、既に４遺伝子欠損によって著しく溶原性が抑えられることを明らかにしたが、実際に４遺伝子が全て欠損する必要があるのかなどの検討を進めている。
LLBファージについても既に作成済みのものを用いてバイオフィルムへの効果などを評価している。
本研究は３つの大きな枠で進めているが、それら３つにおいて順調に研究が進められていると言える。
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| Strategy for Future Research Activity |
今後は、MTFファージにおけるTF遺伝子と宿主行きの関係性について欠損株を構築するなどして解明を目指し、それと並行してT4ファージといったモデルファージにECP52のTF遺伝子を導入することで人工的にMTFファージ化するといった研究を進めていく。
また、溶菌ファージ化については、PSARaにおいて、関連遺伝子の単一欠損株、または複数遺伝子欠損株を作成して溶原性への影響調べる。
LLBファージについては、LLBの産生量という課題克服のため、複数のLLB遺伝子の導入などを試みる。また、大腸菌ど黄色ブドウ球菌だけでなく、EnterococcusやListeriaといったグラム陽性細菌ファージを利用した新たなLLB溶原ファージの構築も進めていく予定である。
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