Project/Area Number |
22K07301
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Research Category |
Grant-in-Aid for Scientific Research (C)
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Allocation Type | Multi-year Fund |
Section | 一般 |
Review Section |
Basic Section 50020:Tumor diagnostics and therapeutics-related
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Research Institution | Osaka University |
Principal Investigator |
橋本 陽子 大阪大学, 医学部附属病院, 医員 (00894247)
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Co-Investigator(Kenkyū-buntansha) |
増永 奈苗 大阪大学, 大学院医学系研究科, 助教 (60961620)
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Project Period (FY) |
2022-04-01 – 2025-03-31
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Project Status |
Granted (Fiscal Year 2022)
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Budget Amount *help |
¥4,290,000 (Direct Cost: ¥3,300,000、Indirect Cost: ¥990,000)
Fiscal Year 2024: ¥1,430,000 (Direct Cost: ¥1,100,000、Indirect Cost: ¥330,000)
Fiscal Year 2023: ¥1,430,000 (Direct Cost: ¥1,100,000、Indirect Cost: ¥330,000)
Fiscal Year 2022: ¥1,430,000 (Direct Cost: ¥1,100,000、Indirect Cost: ¥330,000)
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Keywords | ESR1 mutation / primary breast cancer / 乳癌 / ESR1 / 変異解析 / 再発リスク |
Outline of Research at the Start |
乳癌の約70%はエストロゲン受容体(ER) 陽性であり、内分泌療法の適応となるが、多くは治療中に耐性を生じる。その耐性機序の一つとして、ERをコードするESR1 遺伝子の変異が報告された。この変異は種々の内分泌療法に抵抗性を示し、全生存期間に影響を与えるため、変異を生じないような治療戦略が求められるが、原発巣におけるESR1変異は非常に稀であり、変異がいつどのように生じるか明らかにされていない。 そこで、PCR clamping法を活用した高感度な手法 を用いて、従来見逃されていた可能性のある乳癌原発巣中の微量なESR1変異の検出を試み、 再発後のESR1変異との関連を調査する。
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Outline of Annual Research Achievements |
乳癌原発巣でのESR1変異を高感度に検出する変異解析手法の確立を進めている。具体的には、変異を有する遺伝子のみを選択的に増幅させるPCR clampingを応用し、ESR1 wild-type DNAをclampする人工核酸(LNA oligo)を設計し、変異の濃縮効果や解析結果への影響を確認している。変異検出のターゲットは、ESR1変異の上位2変異であるY537S (1610A>C)およびD538G(1613A>G)とし、そのそれぞれの変異部位に対して独自のLNA-oligoを設計した。設計したLNA-oligoでのclamp効果を検証した結果、約6,000万コピーもの大量のwild-type DNAをクランプできることが実証された。また、wild-typeとmutant-typeを混ぜてPCRを行い、wild-typeを完全にブロックし、混在する変異オリゴには影響を与えないPCR条件を検討した。このLNA oligoを用いてESR1変異検出の感度検定を行い、0.003%程度の微小変異まで検出できることを確認した。さらに、原発巣に含まれる微小変異をより高確率に捉えるために、DNAではなくmRNA(cDNA)を解析対象とすることとした。予備実験として、乳癌細胞株10種にてDNAとmRNAのESR1発現割合を比較し、ER陽性細胞株ではmRNAの方が約3.42倍(1.02-8.92)発現が多い事も実証された。今後は、pilot studyとして、実際のサンプルでmRNA(cDNA)を用いて解析を行ったのち、対象症例での変異解析を行う予定としている。
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Current Status of Research Progress |
Current Status of Research Progress
2: Research has progressed on the whole more than it was originally planned.
Reason
解析手法の確立は概ね順調に進んでいる。PCR条件検討、感度検定が概ね完了した。感度検定の結果、当初予定していたDNAではコピー数が不足することがわかったが、細胞株での予備実験の結果、mRNAを用いることでこの問題を解決することができるとわかった。
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Strategy for Future Research Activity |
今後は、pilot studyとして、実際のサンプルでmRNA(cDNA)を用いて解析を行ったのち、対象症例での変異解析を行う予定としている。
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Report
(1 results)
Research Products
(2 results)