2022 Fiscal Year Research-status Report
RNA編集でCold tumorをHot tumorにする新規癌免疫療法の探求
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20K17653
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Research Institution | Okayama University |
Principal Investigator |
重安 邦俊 岡山大学, 大学病院, 助教 (70544071)
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Project Period (FY) |
2020-04-01 – 2024-03-31
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Keywords | RNA editing / 大腸癌 / 化学放射線療法 / ネオアンチゲン |
Outline of Annual Research Achievements |
大腸がん(CRC)の多くはマイクロサテライト安定型(MSS)であり、免疫チェックポイント阻害剤(ICI)に対する奏効率が低いことがしばしば指摘されている。RNA編集は、アミノ酸配列を変化させることでネオアンチゲンを生成する。本研究では、化学放射線療法(CRT)によりRNA編集を人為的に誘導し、MSSのCRCにネオアンチゲンを生成させた。543例のCRC検体を系統的に解析し、ADAR1の発現パターンを検討した。また、in vitroおよびin vivoの実験も行った。マイクロサテライト不安定性のCRCでは、RNA編集酵素ADAR1の発現が上昇し、ICIとの高い親和性をもたらしていた。MSS CRCではADAR1の発現は低かったが、オキサリプラチン(OX)を含むCRTにより、ADAR1が誘導されRNA編集レベルが上昇した。免疫組織化学的解析により、CAPOX(カペシタビン+OX)放射線療法を受けたCRC患者では、手術のみで治療したCRC患者のADAR1発現と比較して、ADAR1の発現が上昇することが示された(p<0.001)。他のレジメンと比較して、OXを用いたCRTは、1型インターフェロンをトリガーとするADAR1の発現誘導を介して、MSS CRC細胞株(HT29およびCaco2、p<0.001)のRNA編集を効果的に誘導した。OXを用いたCRTは、ネオアンチゲン候補であるサイクリンIのRNA編集を促進した。OX-CRTレジメンによるRNA編集により、ネオアンチゲンを人為的に誘導することができる。CRTはRNA編集によりプロテオミクス多様性を促進することができる。
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Current Status of Research Progress |
Current Status of Research Progress
3: Progress in research has been slightly delayed.
Reason
動物実験モデルの作成を行っているが、これまでin vitroの解析ではヒトの細胞株を用いてきた。マウスモデルではマウスの細胞を用いる必要があるため、この切り替えに時間を要し、全体の計画が遅れている。
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Strategy for Future Research Activity |
臨床サンプルの解析と細胞株を用いた実験は完了している。 今後は、マウスを使った動物実験モデルを行いたい。マウスの直腸癌細胞株によるマウスモデルを作成し、化学放射線療法を行い、RNA編集の誘導レベルを計測する。そののちに、抗PD-1抗体を併用する動物実験を行う予定である。
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Causes of Carryover |
マウスモデルの作成が遅れているため、次年度使用額が生じました。 現在、マウスモデル(化学放射線療法+抗PD-1抗体)によるRNA編集の解析を進め、回復に努めています。
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