2023 Fiscal Year Research-status Report
R3HDM1欠損症の発症機序として見出した遺伝子・マイクロRNA不均衡仮説の検証
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22K07860
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Research Institution | Institute for Developmental Research Aichi Developmental Disability Center |
Principal Investigator |
福士 大輔 愛知県医療療育総合センター発達障害研究所, 遺伝子医療研究部, 主任研究員 (90397159)
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Project Period (FY) |
2022-04-01 – 2025-03-31
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Keywords | R3HDM1 / miR-128 / 不均衡な発現 / 神経突起 / RNA結合タンパク質 / 軽度知的障害 / 自閉症様行動 |
Outline of Annual Research Achievements |
本研究は、研究代表者らが世界で初めて報告したR3HDM1欠損症の発症機序の解明を目的としている。本症例は、2番染色体の逆位によりR3HDM1がハプロ不全となるが、同遺伝子に包含されるマイクロRNAであるMIR128-1(miR-128-1)の発現量は、健常者と同等であり、逆位の影響を受けないことが判明した(Fukushi et al., 2021)。マウスの脳神経細胞において、miR-128は神経突起の伸長を阻害し、R3HDM1は伸長を促進すると考えられ、R3HDM1とmiR-128-1の不均衡な発現が本疾患の発症機序である可能性は高い。 今年度は以下を明らかにした。①R3HDM1と同属のタンパク質であるARPP21は、神経突起上でR3HDM1と共局在するのか否かを検討する予備実験を行った。ARPP21については、本解析に使用できる市販の抗体が市販されていないため、Flag-ARPP21を作製し、HeLa細胞に対してR3HDM1抗体と共に共染色を行い、共焦点レーザー顕微鏡観察を行った。その結果、少なくともHeLa細胞ではR3HDM1とARPP21は共局在しないことが判明した。②マウス脳神経細胞におけるR3HDM1の分布について、これまでの神経細胞での解析に加え、グリア細胞におけるR3HDM1の分布についても、R3HDM1抗体を用いた蛍光免疫染法で解析を行った。その結果、神経細胞とは異なり、核での分布が少なく、核周辺や細胞質に広く分布していることが判明した。③本症例の発症機序には、R3HDM1とmiR-128-1の不均衡な発現が関与すると考えられるため、i-GONAD法によるモデルマウスの作製を進めた。今年度は、B6系統への遺伝的背景の交換を進め、5回戻し交配を行った。同じく、miR-128-1欠損モデルマウスも作出に成功し、B6系統への遺伝的背景の交換を進めている。
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Current Status of Research Progress |
Current Status of Research Progress
4: Progress in research has been delayed.
Reason
今年度は、R3HDM1の細胞内における局在の解析、および神経突起を経由してシナプスまで運搬するmRNAを同定することを目標に研究を行った。R3HDM1が神経細胞において、核に多く分布していることはこれまでに見出していたが、それ以外の脳細胞におけるR3HDM1の分布については不明であった。そこで今年度は、グリア細胞におけるR3HDM1の分布を明らかにした。また、R3HDM1と同属のタンパク質であるARPP21との局在の差異についても、両者は細胞内で異なる局在を示す可能性があることを明らかにした。しかし、今年度予定していた神経突起上をR3HDM1がどのようなmRNAを運搬するのかを、RNA-seq解析で明らかにするには至らなかった。これは、前年度から引き続いている培養環境のトラブルが原因であるが、最近ようやく改善されたため、今後はマウス胎児の準備が整い次第、神経突起に特異的なRNAの同定を行う。 一方、疾患モデルマウスの作出は順調であり、R3HDM1のホモ、ヘテロ欠失マウス、miR-128-1遺伝子の欠損マウス、いずれについても継代繁殖を行っており、細胞学的、組織学的解析や行動解析に向けて準備中である。
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Strategy for Future Research Activity |
R3HDM1欠損症の発症機序を解明するためには、まずR3HDM1自体の機能を解明することが重要であるが、今年度もR3HDM1がシナプスまで運搬するmRNAを同定するには至らなかった。そこで次年度は、当研究部門でRNA解析に精通する山田憲一郎主任研究員を研究分担者に加え、研究のスピードを上げる。山田主任研究員は、日常的に培養神経細胞からのRNA抽出、さらに疾患モデルマウスの交配、維持を行っているため、1)既に抽出済みのR3HDM1ホモ欠失マウスの神経突起由来のRNAに加え、 R3HDM1の野生型マウスの神経突起由来のRNAを抽出し、両者でRNA-Seqを行うことで、R3HDM1がシナプスへ運搬する標的mRNAを網羅的に検索する。2)標的mRNAが同定できた場合、マウスの大脳皮質あるいは海馬由来の初代培養神経細胞に対してmRNAとR3HDM1を用いてin situハイブリダイゼーションを行い、神経突起上でR3HDM1が標的mRNAと結合しているのかを解析する。3)作製済みのR3HDM1の欠損マウス、miR-128-1遺伝子の欠損マウスを用いて、①胎仔由来の初代培養神経細胞を用いた神経突起形成の差異の解析、②シナプスまで運搬するmRNAの差異の解析、③脳におけるR3HDM1の分布や発現の差異についての脳薄切切片を用いた免疫染色による解析、④R3HDM1欠損マウスに特異的な行動様式(活動性、学習・記憶、不安・うつ、注意機能、運動機能など)の解析を行う。さらに両モデルマウスを交配し、本疾患のR3HDM1とmiR-128-1の不均衡モデルマウスを作製し、上記と同様の解析を行うことでR3HDM1欠損の脳病態を明らかにし、本症例の軽度知的障害や自閉症様行動の病因を解明する。
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Causes of Carryover |
神経突起からRNAを抽出してRNA-seq解析を行う予定が次年度にずれ込んだため、RNA-seq解析に掛かる費用が今年度使用できず、来年度に繰り越すことになった。
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