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伸長精子細胞-Sertoli細胞間接着因子に着目した精巣内精子同定法の開発

Research Project

Project/Area Number 21K09375
Research Category

Grant-in-Aid for Scientific Research (C)

Allocation TypeMulti-year Fund
Section一般
Review Section Basic Section 56030:Urology-related
Research InstitutionNagoya City University

Principal Investigator

阪野 里花  名古屋市立大学, 医薬学総合研究院(医学), 研究員 (20600753)

Co-Investigator(Kenkyū-buntansha) 武田 知樹  名古屋市立大学, 医薬学総合研究院(医学), 助教 (30814256)
安井 孝周  名古屋市立大学, 医薬学総合研究院(医学), 教授 (40326153)
野崎 哲史  名古屋市立大学, 医薬学総合研究院(医学), 研究員 (50813432)
水野 健太郎  名古屋市立大学, 医薬学総合研究院(医学), 准教授 (70448710)
岩月 正一郎  名古屋市立大学, 医薬学総合研究院(医学), 講師 (70595397)
梅本 幸裕  名古屋市立大学, 医薬学総合研究院(医学), 教授 (80381812)
Project Period (FY) 2021-04-01 – 2025-03-31
Project Status Granted (Fiscal Year 2023)
Budget Amount *help
¥4,030,000 (Direct Cost: ¥3,100,000、Indirect Cost: ¥930,000)
Fiscal Year 2023: ¥650,000 (Direct Cost: ¥500,000、Indirect Cost: ¥150,000)
Fiscal Year 2022: ¥1,690,000 (Direct Cost: ¥1,300,000、Indirect Cost: ¥390,000)
Fiscal Year 2021: ¥1,690,000 (Direct Cost: ¥1,300,000、Indirect Cost: ¥390,000)
Keywordsmicro〜TESE / 精細管 / apical ES / F-actin / 多光子顕微鏡 / micro-TESE / 非閉塞性無精子症 / 伸長精子細胞 / Sertoli細胞 / 精巣毒性 / Micro-TESE / 蛍光顕微鏡
Outline of Research at the Start

【研究1:ヒトapical ESの解明】apical ESタンパクについて、閉塞性無精子症の精巣組織を用いてRNA-sequenceを行う。
【研究2:精子形成障害モデルの作成】ラットの精巣にシスプラチンを局所注射する。
【研究3:精子形成障害モデルにおけるapical ESタンパクの発現局在の解析】精子形成障害モデルラットの精巣切片を用いて、蛍光免疫染色を行う。
【研究4:蛍光標識抗体の作成】Apical ESタンパクに対する蛍光標識抗体を作成する。
【研究5:Apical ES蛍光標識による精子を含む精細管の同定】蛍光標識抗体を精子形成障害モデルラットに投与し、精細管を多光子顕微鏡で観察する。

Outline of Annual Research Achievements

非閉塞性無精子症の標準治療である顕微鏡下精巣内精子採取術(micro-TESE)では、精子を含む可能性が高い太く蛇行した精細管を採取する。しかし精子採取率は25〜60%と低く、報告によって差がある。原因として、外観に基づいた精細管の選択が主観的であることが挙げられ、より客観的な手法の開発が望まれる。本研究では精子形成のマーカーとしてF-actinを用いた。F-actinは精子細胞の接着複合体であるapical ectoplasmic specialization(apical ES)に強く発現する。Apical ESがある精細管には精子細胞があると考え、apical ESのF-actinを蛍光標識することで精子を含む精細管の同定を試みた。
10週齢ラットの精巣に蛍光標識剤(SPY555-Actin)を注入し、組織の固定や薄切をせずに多光子顕微鏡で観察した。また、蛍光標識剤の精巣毒性をTUNEL染色で評価した。その結果、蛍光標識剤を注入したapical ESのF-actinが観察され、F-actinの局在を見ることで精子細胞の分化段階が識別された。蛍光標識剤を注入した精巣は正常精巣と比較して、1精細管あたりのTUNEL陽性細胞数は増加傾向にあったが、有意差はなかった。
精細管のF-actinを蛍光標識し、多光子顕微鏡で観察することで、組織の固定や薄切をせずに伸長精子細胞の分化段階を識別できた。蛍光標識剤の明らかな精巣毒性は見られなかった。多光子顕微鏡による観察は、活動的な精子形成部位を同定できる可能性がある。
より毒性の低い蛍光標識法を開発するために、蛍光標識剤の濃度調整や投与法の変更を行なっているが、その毒性評価については現在解析中である。その後は、ヒトapical ES蛋白の同定を行なって、蛍光標識のターゲットを検討する予定である。

Current Status of Research Progress
Current Status of Research Progress

3: Progress in research has been slightly delayed.

Reason

蛍光標識ターゲットの選定のために、ヒトapical ESのトランスクリプトーム解析を行う予定であったが、動物実験でのapical ESの蛍光標識、蛍光標識剤による毒性評価が優先されると考え、こちらを優先した。ラットapical ESの蛍光標識、蛍光標識剤による毒性評価に時間を要したため、実験遂行が遅れた。

Strategy for Future Research Activity

膜透過性を持つF-actin蛍光標識剤によって、apical ESを視認可能とし、精子形成段階を同定することはできる。ただし、精巣毒性の問題があるため、試薬の濃度、投与法などについてはさらなる検討が必要である。ヒトapical ESのトランスクリプトーム解析よりも、さらなる動物実験が優先される。

Report

(3 results)
  • 2023 Research-status Report
  • 2022 Research-status Report
  • 2021 Research-status Report

URL: 

Published: 2021-04-28   Modified: 2024-12-25  

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