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Site-specific and high efficient epitranscriptomic manipulation based on the enzymatic activity

Research Project

Project/Area Number 23K23477
Project/Area Number (Other) 22H02210 (2022-2023)
Research Category

Grant-in-Aid for Scientific Research (B)

Allocation TypeMulti-year Fund (2024)
Single-year Grants (2022-2023)
Section一般
Review Section Basic Section 37020:Chemistry and chemical methodology of biomolecules-related
Research InstitutionKyoto University

Principal Investigator

今西 未来  京都大学, 化学研究所, 准教授 (80362391)

Project Period (FY) 2022-04-01 – 2025-03-31
Project Status Granted (Fiscal Year 2024)
Budget Amount *help
¥17,290,000 (Direct Cost: ¥13,300,000、Indirect Cost: ¥3,990,000)
Fiscal Year 2024: ¥7,410,000 (Direct Cost: ¥5,700,000、Indirect Cost: ¥1,710,000)
Fiscal Year 2023: ¥4,940,000 (Direct Cost: ¥3,800,000、Indirect Cost: ¥1,140,000)
Fiscal Year 2022: ¥4,940,000 (Direct Cost: ¥3,800,000、Indirect Cost: ¥1,140,000)
KeywordsRNA脱メチル化 / N6メチルアデノシン / RNAメチル化修飾酵素 / エピトランスクリプトーム / ゲノム編集
Outline of Research at the Start

mRNAの多くで見られる代表的な修飾塩基であるN6メチルアデノシン(m6A)は、様々な生命現象に関与する。その役割を解明するための戦略として、配列選択的なエピトランスクリプトーム制御が試みられてはいるが、機能解析の実現に向けては、選択性と効率の向上が鍵となる。そこで本研究では、酵素およびRNA結合分子の性質に基づいた分子デザインにより、高効率かつ高選択的なエピトランスクリプトーム制御法の開発を目指す。

Outline of Annual Research Achievements

本年度は、CRISPR/dCas13と脱メチル化酵素FTOおよびALKBH5とを融合させたタンパク質を用いたin vitroにおける標的選択的脱メチル化評価系の構築を行った。大腸菌発現系を用いたタンパク質発現精製条件の最適化、ガイドRNAのin vitro合成、およびN6-メチルアデノシンを含む標的RNAの合成、精製法を確立した。また、複合体を必要としないシンプルな配列選択的脱メチル化系として、RNA結合タンパク質PUFと脱メチル化酵素とを融合させたタンパク質をデザインし、大腸菌発現系より精製して、配列選択的な脱メチル化能を解析した。脱メチル化の評価は、N6-メチルアデノシン感受性のエンドリボヌクレアーゼMazFを用いた電気泳動による評価および、SELECT法を用いて行った。PUFタンパク質は、通常8つのリピートから構成されており、対応するRNA8塩基に結合するが、このリピート中に含まれるRNAを認識するアミノ酸にアラニン置換を導入して、7塩基認識型、および6塩基認識型へと改変したPUF改変体を作製した。これらの変異体は8塩基認識型とオーバーラップする塩基配列を認識しつつ、8塩基認識型と比較してRNAへの結合親和性が弱まった一方で、6塩基認識型とFTOとの融合体は、より低濃度で標的とするPUF結合配列の近傍に存在するN6-メチルアデノシンに対して高いRNA脱メチル化活性を示した。より詳細な検討が必要ではあるが、この結果は、RNAへの結合が弱まることで、脱メチル化酵素がRNAから解離しやすくなり、酵素反応のターンオーバーが高まっている可能性を示唆しているといえる。

Current Status of Research Progress
Current Status of Research Progress

2: Research has progressed on the whole more than it was originally planned.

Reason

RNA結合とRNA脱メチル化に関する興味深い関係を見出せたため。

Strategy for Future Research Activity

昨年度に構築した、CRISPR/dCas13システムを利用したin vitroにおける配列選択的脱メチル化評価系を利用して、ガイドの長さ、および、ガイドと 標的の両者の高次構造に着目した解析を行う。また、配列選択性に関しては、 メチル化制御酵素自体のRNA結合性が標的の選択性の低下の一因であることを考慮し、RNAとの相互作用領域に着目した酵素の改変体とRNA結合 分子との組み合わせを種々検討する。

Report

(1 results)
  • 2022 Annual Research Report
  • Research Products

    (5 results)

All 2023 2022

All Journal Article (1 results) (of which Peer Reviewed: 1 results) Presentation (4 results) (of which Invited: 2 results)

  • [Journal Article] Mechanisms and strategies for determining m6A RNA modification sites by natural and engineered m6A effector proteins2022

    • Author(s)
      M. Imanishi
    • Journal Title

      Chem. Asian J.

      Volume: 17 Issue: 16

    • DOI

      10.1002/asia.202200367

    • Related Report
      2022 Annual Research Report
    • Peer Reviewed
  • [Presentation] オフターゲットを低減した 配列選択的RNA脱メチル化酵素の創製2023

    • Author(s)
      今西未来, 音成兼光,浅見有璃,二木史朗
    • Organizer
      日本薬学会第143年会
    • Related Report
      2022 Annual Research Report
  • [Presentation] RNA化学修飾の検出と選択的制御2023

    • Author(s)
      今西未来
    • Organizer
      IRCCS成果報告会
    • Related Report
      2022 Annual Research Report
    • Invited
  • [Presentation] ALKBH5を用いた配列特異的なRNA脱メチル化酵素の創出2022

    • Author(s)
      浅見 有璃、音成 兼光、今西 未来、二木 史朗
    • Organizer
      第95回日本生化学会大会
    • Related Report
      2022 Annual Research Report
  • [Presentation] カスタム遺伝子制御:ゲノム編集のこれから2022

    • Author(s)
      今西未来
    • Organizer
      日本薬学会関西支部市民公開講座
    • Related Report
      2022 Annual Research Report
    • Invited

URL: 

Published: 2022-04-19   Modified: 2024-08-08  

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