| 研究課題/領域番号 |
21K06112
|
|---|
| 研究種目 |
基盤研究(C)
|
| 配分区分 | 基金 |
|---|
| 応募区分 | 一般 |
|---|
| 審査区分 |
小区分43040:生物物理学関連
|
|---|
| 研究機関 | 大阪大学 |
|---|
研究代表者 |
大岡 宏造 大阪大学, 全学教育推進機構, 教授 (30201966)
|
|---|
| 研究期間 (年度) |
2021-04-01 – 2024-03-31
|
| 研究課題ステータス |
交付 (2022年度)
|
| 配分額 *注記 |
4,290千円 (直接経費: 3,300千円、間接経費: 990千円)
2023年度: 1,300千円 (直接経費: 1,000千円、間接経費: 300千円)
2022年度: 1,300千円 (直接経費: 1,000千円、間接経費: 300千円)
2021年度: 1,690千円 (直接経費: 1,300千円、間接経費: 390千円)
|
|---|
| キーワード | 光合成 / 反応中心 / エネルギー移動 / 電荷分離 / 超高速分光 / ヘリオバクテリア / 緑色イオウ細菌 / 電子移動 / キノン / NMR / タイプ1 / ホモダイマー |
|---|
| 研究開始時の研究の概要 |
本研究では、ヘリオバクテリアおよび緑色イオウ細菌のもつPS Iタイプ反応中心の完全な分子構築を解析し、構造機能相関に基づいてエネルギー移動機構および特異な電子移動経路を解明する。具体的には以下の研究項目について推進する予定である。
【１】ヘリオバクテリアHbt. modesticaldumおよび緑色イオウ細菌Cba. Tepidumに由来する反応中心の結晶化あるいはクライオ電子顕微鏡による構造解析
【２】ヘリオバクテリア反応中心のキノン結合部位周辺の分子環境をフーリエ変換赤外分光法により探索
【３】ヘリオバクテリア反応中心の超高速分光によるエネルギー移動および電子移動過程の解析
|
| 研究実績の概要 |
１．超高速分光による初期電荷分離過程の解析
ヘリオバクテリアは絶対嫌気性の光合成細菌である。光合成反応中心は高等植物やシアノバクテリアの光化学系１と同じタイプ１反応中心であり、ホモダイマー構造をとることから始原型RCと考えられている。本研究では始原型光合成反応におけるエネルギー変換過程を解明することを目的とし、色素間励起エネルギー移動および初期電荷分離形成までの反応過程を追跡している。今年度は、低温（140 K）での測定を行ったことで、過去に行った室温での測定結果と比較し新たな知見を得ることができた。室温測定において816 nmに観測されていたBChl gの基底状態ブリーチの減衰は、長波長アンテナ色素red-BChl gまたは電子伝達成分の[P-Acc]の励起カップリングに由来する2つの可能性を考えていた。しかし低温測定においては、明瞭に電荷分離の形成を示すBChl g（PまたはAcc）の信号が786nmに観測され、816 nmの減衰成分はred-BChl gに帰属することができた。また低温ではいずれの励起波長（490, 770, 820 nm）においても、red-BChl gを経由して電荷分離が生じていることが明らかとなった。室温において電荷分離したPまたはAccの基底状態ブリーチが観測されなかった原因は、同じ波長に別のアンテナBChl gの励起緩和が重なり信号が相殺されたためと考えられる。このことから、室温では電荷分離に向かうエネルギー移動において低温とは異なる素過程が含まれることが示唆された。
２．緑色イオウ細菌由来FA/FBタンパクの発現系構築
緑色イオウ細菌由来FA/FBタンパクをコードする遺伝子をpETベクターに組み込み、大腸菌内での大量発現を試みた。可溶性ドメインのみをコードするコンストラクトを構築したにも関わらず、大腸菌内では不溶性となってしまった。
|
| 現在までの達成度 (区分) |
現在までの達成度 (区分)
2: おおむね順調に進展している
理由
100フェムト秒ポンプ・プローブ分光法による超高速分光を用いることにより、ヘリオバクテリア反応中心の色素間励起エネルギー移動および初期電荷分離形成までの反応過程を詳細に追跡することができ、始原型光合成反応におけるエネルギー変換過程の特性について新規な知見が蓄積されつつある。昨年度はカロテノイドの近くに長波長吸収帯を構成するBmd812とBmd787のBChl g集団が存在することを明らかにし，P800にエネルギーを渡すアンテナ色素として機能していることを示した。今年度は816 nmに吸収を示す長波長アンテナ色素red-BChl gに励起エネルギーが一旦移動した後、初期電荷分離過程が始まることを明らかにすることができた。緑色イオウ細菌由来FA/FBタンパクの発現系構築には失敗したが、可溶性ドメインに存在するクラスター形成に不要なシステイン残基を他の残基に置換すれば上手く発現するのではないかと考えている。このように本研究目的である「光合成細菌のもつタイプ１反応中心の分子構築と反応機構の全容解明」に向けて、全体的に良好な研究成果が得られた。
|
| 今後の研究の推進方策 |
ヘリオバクテリア反応中心の超高速分光によるエネルギー移動および電子移動過程の解析は非常に順調に進んでいる。カロテノイドからアンテナBChl gへの高効率の励起エネルギー移動に関しては、今年度にデータをまとめて投稿予定であったが未投稿のままである。その理由は、新たに低温（140 K）での測定を行ったことで、過去に行った室温での測定結果と比較することが必要となり、励起エネルギー移動から初期電荷分離までの過程を詳細に検討したためである。現在、長波長アンテナ色素red-BChl gの存在が明らかとなり、カロテノイド周辺の色素集団の存在状態とエネルギー移動に関する論文と、uphillのエネルギー移動から初期電荷分離に至る過程に関する論文の2報準備することを考えている。一方、緑色イオウ細菌由来FA/FBタンパクをコードする遺伝子については、ヘリオバクテリア内で発現することを計画している。ヘリオバクテリアが本来持っているFA/FBタンパクは水溶性であるが、緑色イオウ細菌由来FA/FBタンパクは疎水性であり、反応中心と結合する可能性がある。また令和5年度から新たに学生（修士課程1年）が参画するので、計画通りに進んでいなかったフーリエ変換赤外分光法（FTIR）によるキノール生成の検出の試みについて取り組む予定をしている。
|
