| 研究課題/領域番号 |
22K07285
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| 研究種目 |
基盤研究(C)
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| 配分区分 | 基金 |
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| 応募区分 | 一般 |
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| 審査区分 |
小区分50020:腫瘍診断および治療学関連
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| 研究機関 | 福島県立医科大学 |
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研究代表者 |
花山 寛之 福島県立医科大学, 医学部, 助教 (00622333)
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| 研究分担者 |
河野 浩二 福島県立医科大学, 医学部, 教授 (40283204)
三村 耕作 福島県立医科大学, 医学部, 准教授 (90568031)
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| 研究期間 (年度) |
2022-04-01 – 2025-03-31
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| 研究課題ステータス |
交付 (2022年度)
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| 配分額 *注記 |
4,290千円 (直接経費: 3,300千円、間接経費: 990千円)
2024年度: 1,170千円 (直接経費: 900千円、間接経費: 270千円)
2023年度: 1,560千円 (直接経費: 1,200千円、間接経費: 360千円)
2022年度: 1,560千円 (直接経費: 1,200千円、間接経費: 360千円)
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| キーワード | 制御性T細胞 / VEGF receptor 2 / 大腸癌 |
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| 研究開始時の研究の概要 |
本研究では、VEGF Receptor 2 (VEGFR2) に焦点を置き、腫瘍微環境において腫瘍免疫を強く抑制する制御性T細胞 type II（Treg-II）の抑制方法の開発を行う。
進行結腸・直腸癌手術摘出標本を用いて、腫瘍微小環境に存在するTreg-IIにおけるVEGFR2の発現状況をflow cytometryと蛍光免疫染色で解析し、in vitroの実験系でVEGFR2経路を介するTreg-IIの制御方法の開発に努める。
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| 研究実績の概要 |
① The Cancer Genome Atlas （TCGA） のcolorectal cancer (CRC) datasetを用いて、Foxp3とVEGF receptor 2 (VEGFR2)発現の相関関係、制御性T細胞（Treg） signature（IL2RA, FOXP3, CTLA4, SLC35D1, GDPD3, CISHの平均値）とVEGFR2発現の相関関係を検討した。結果は、前者が r=0.4411 p<0.0001、後者が r=0.3809 p<0.0001であり、各々が有意に正の相関関係を示していた。
② CRC症例のTregにおけるVEGFR2発現を検討する際のコントロールとして、健常人の末梢血単核球検体を用いてflow cytometryを行った。同実験で用いる抗体（CD3、CD4、CD45RA、Foxp3、VEGFR2、7AAD）の働きを確認し、コンペンセーションを確立した。また、TregにおけるVEGFR2の発現を確認した。
③ 術前化学療法、放射線療法、閉塞性CRCに対するステント挿入術を施行されていないCRC症例を対象として、末梢血単核球、腫瘍浸潤リンパ球、プレパラート（手術摘出標本）の検体を収集している。
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| 現在までの達成度 (区分) |
現在までの達成度 (区分)
2: おおむね順調に進展している
理由
① Public data baseを用いた解析を行った。
② 今後の実験に使用するflow cytometryの抗体の作用を確認し、機器の設定を確立した。
③ コントロール検体において、TregにおけるVEGFR2発現を確認した。
④ CRC症例から、末梢血単核球、腫瘍浸潤リンパ球、プレパラート（手術摘出標本）の検体収集を開始した。
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| 今後の研究の推進方策 |
① 30例のCRC症例から、末梢血単核球、腫瘍浸潤リンパ球、プレパラート（手術摘出標本）の検体を収集する。ただし、術前化学療法・放射線療法と閉塞性CRCに対するステント挿入は、腫瘍局所の免疫応答に影響を及ぼす可能性があるため、これらの治療が施行された症例は本研究対象から除外する。腫瘍浸潤リンパ球は、新鮮な手術摘出標本の一部（癌を含む腫瘍辺縁部）より、gentleMACS Dissociator（Miltenyi Biotec）を用いて分離する。
② ①の検体（末梢血単核球、腫瘍浸潤リンパ球）を用いて、CRC症例のTregにおけるVEGFR2の発現状況をflow cytometryで検討する。CD3、CD4、CD45RA、FOXP3を用いてTregを5つに分類し、各分画におけるVEGFR2の発現程度を比較検討する。
③ ①と同症例の手術切除標本より得たプレパラートを用いて、Treg (Foxp3) におけるVEGFR2の発現を蛍光多重免疫染色で検討する。また、正常粘膜部位と腫瘍部位において、TregとVEGFR2陽性Tregの浸潤頻度について比較検討する。
④ 進行CRC5例の抹消血単核球より、CellVivo Human Treg Differentiation kit（R&D Systems）を用いてTregを分化誘導する。VEGF and/or 抗VEGFR2抗体の存在下でautologousのリンパ球と分化誘導したTregを共培養し、共培養後におけるCD4陽性またはCD8陽性T細胞の増殖能の変化をCSFEで、誘導されるapoptosisをAnnexin Vと7-AADを用いてflow cytometryで解析する。加えて、培養後の培養液上清中におけるTGF-βとIL-10の濃度をELISAで測定する。
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