| 研究課題/領域番号 |
23KJ1785
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| 研究種目 |
特別研究員奨励費
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| 配分区分 | 基金 |
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| 応募区分 | 国内 |
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| 審査区分 |
小区分44010:細胞生物学関連
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| 研究機関 | 福島県立医科大学 |
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研究代表者 |
朽津 芳彦 福島県立医科大学, 医学(系), 特別研究員(PD)
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| 研究期間 (年度) |
2023-04-25 – 2026-03-31
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| 研究課題ステータス |
交付 (2023年度)
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| 配分額 *注記 |
4,680千円 (直接経費: 3,600千円、間接経費: 1,080千円)
2025年度: 1,560千円 (直接経費: 1,200千円、間接経費: 360千円)
2024年度: 1,560千円 (直接経費: 1,200千円、間接経費: 360千円)
2023年度: 1,560千円 (直接経費: 1,200千円、間接経費: 360千円)
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| キーワード | リソソーム / STING |
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| 研究開始時の研究の概要 |
STING は小胞体やゴルジ体では分解されない一方で、リサイ クリングエンドソームに輸送されたのちに分解される。した がって、STING は輸送される過程で、ミクロオートファジー 分解の基質特異性を獲得していると考えられる。申請者は、ユ ビキチン化修飾を受けた STING 被覆小胞クラスターがミクロ オートファジーにより分解されるという予備的な結果を得て いる。本研究ではこの現象を手がかりとして、ミクロオートフ ァジーの基質特異性を明らかにする。
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| 研究実績の概要 |
小胞体に局在する膜タンパク質STINGは、ウイルス感染などによって細胞質中に出現したDNAによって活性化し、I型インターフェロンや炎症性サイトカインの産生を通じて自然免疫シグナルを誘導する。STINGは、DNA刺激に伴って、小胞体からゴルジ体へと局在を変化させることで下流シグナルを活性化する。その後、STINGはリサイクリングエンドソームを通過し、最終的にリソソームへと運ばれる。超解像度ライブセルイメージングにより、STINGのリソソームへの輸送過程を観察すると、DNA刺激後3時間でSTINGがリソソームに接近したのち、約30秒でリソソーム内に直接取り込まれ、約80秒で分解される現象を多数捉えた。続いて、「光-電子相関顕微鏡法/CLEM法」により、STINGおよびリソソームを観察した。その結果、STINGは小胞の集合体(STING小胞クラスター)として観察されたのちにリソソームへと直接取り込まれることが判明した。さらに、ミクロオートファジーの最終過程であるリソソームへの取り込み過程を制御する遺伝子群として、ESCRT (endosomal sorting complexes required for transport)複合体を同定した。ESCRT複合体の発現抑制条件下では、STINGシグナルが有意に増強されていたことから、ミクロオートファジーがSTINGシグナルの収束に必要であることが明らかになった（Kuchitsu et al, Nat. Cell Biol 2023）。このように、ミクロオートファジーの最終過程の分子機構については明らかになりつつあるが、STINGがどのように認識されて、リソソームへと取り込まれるのかについてはわかっていない。本研究では、STINGを基質モデルとすることで、ミクロオートファジーの基質特異性を決定する分子機構を解明することを目的とした。
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| 現在までの達成度 (区分) |
現在までの達成度 (区分)
2: おおむね順調に進展している
理由
本年度は、STINGのリソソーム分解をハイスループットに評価できる実験系を構築した。具体的には、Firefly Luciferase(P2A切断配列)NanoLuc Luciferase-STING 安定発現細胞を樹立した。さらにキナーゼ阻害剤 ライブラリー（約150種）を用いてSTINGの分解を制御するキナーゼ阻害剤を同定した。解析の結果、当該キナーゼ阻害剤を添加することで、STINGがリソソームの外に蓄積し、STING依存的な下流応答が有意に持続することがわかった。以上の結果から当該キナーゼを阻害することで、STINGのリソソームミクロオートファジー分解が阻害されていることが明らかになった。
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| 今後の研究の推進方策 |
今後は、本年度明らかになったSTINGのミクロオートファジー分解の新規メカニズムを原著論文として発表する。
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