| 研究課題/領域番号 |
24K12796
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| 研究種目 |
基盤研究(C)
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| 配分区分 | 基金 |
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| 応募区分 | 一般 |
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| 審査区分 |
小区分56060:眼科学関連
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| 研究機関 | 独立行政法人国立病院機構(東京医療センター臨床研究センター) |
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研究代表者 |
岡本 晶子 (須賀) 独立行政法人国立病院機構(東京医療センター臨床研究センター), 分子細胞生物学研究部, 研究員 (70450400)
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| 研究期間 (年度) |
2024-04-01 – 2027-03-31
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| 研究課題ステータス |
交付 (2024年度)
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| 配分額 *注記 |
4,680千円 (直接経費: 3,600千円、間接経費: 1,080千円)
2026年度: 1,430千円 (直接経費: 1,100千円、間接経費: 330千円)
2025年度: 1,560千円 (直接経費: 1,200千円、間接経費: 360千円)
2024年度: 1,690千円 (直接経費: 1,300千円、間接経費: 390千円)
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| キーワード | 遺伝性網膜疾患 / ゲノム解析 / 構造変異 / 同義変異 / スプライシング / 有害変異 |
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| 研究開始時の研究の概要 |
本研究では、ゲノム解析により遺伝性網膜疾患（IRD）の原因候補として検出したスプライス変異と遺伝子内の構造変異の有害性をスプライスアッセイおよび患者由来細胞を用いて実験的に検討する。IRDの原因遺伝子変異として非コード領域や構造変異の寄与が示されているが、スプライス変異や遺伝子の一部の構造変異が翻訳産物に与える影響の予測は困難であり、実験的検討が必要である。我々はIRD患者458家系のゲノム解析を行い、原因候補となるスプライス変異及びエクソンの欠失や重複を検出した。有害性の実験的検討によりIRD原因遺伝子解析の同定率向上と発症機序の理解、治療標的の明確化につなげる。
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| 研究実績の概要 |
R６年度は主にミニジーンアッセイのベクター作成効率と評価系を確立することを目標とした。ベクターに挿入可能なできるだけ大きい構造変異および一塩基置換の間で実験系を比較することを目的とし、WGS結果から原因候補変異の有無を選別し終えた560検体から目的に合致した変異を選択した。その結果、桿体一色覚患者5家系に共通して見られたRPGRIP1 exon18欠損変異と、同じく杆体一色覚で既知の原因遺伝子であるCNGB1のエキソン内に検出されたアミノ酸は変化しないがSpliceAIで新規ドナーサイトが形成される可能性が高いと予想された1塩基置換（同義性変異）について、スプライスアッセイベクターを構築しミニジーンアッセイを行った。
HEK293T細胞にベクターを導入し、RNAを回収してRT-PCRによりRNA産物のサイズおよび配列を確認したところ、RPGRIP1 exon18欠損からはエキソン17-エキソン19が直接つながったRNAが合成され、途中にストップコドンができることが確認された。一方CNGB1の同義性変異はRNA産物の長さ、配列に影響しなかった。それぞれ1例ずつのため、同義性変異のスプライシングへの影響は予想スコアよりも低いのかミニジーンアッセイでは再現しにくいのかはさらに検討が必要である。また変異を挟んで遺伝子自体のエキソンを利用する場合とベクターに用意されているエキソンを利用する場合で変異の影響が異なる可能性もある。同義性置換を含む数塩基の変異の影響を検出するベクターデザインについて検討を進める。また挿入領域の長さを考慮すると検討できる変異の数が絞られるため、全ゲノム解析の結果から検討候補変異を探す作業も継続する。
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| 現在までの達成度 |
現在までの達成度
2: おおむね順調に進展している
理由
研究計画当初、ゲノムシーケンスを行い家系ごとに原因変異の絞り込みを行った199家系のうち22家系で遺伝子の一部の構造変異（複数エキソンの欠損など）、スプライス変異の可能性が高い同義変異、Aluの挿入が検出されたが、構造変異については欠損領域の長さ、同義変異を含むエキソンの両側のイントロン‐エキソンの長さを考慮して選別すると、ミニジーンアッセイ可能な変異の数は非常に少なくなった。上の条件を考慮して選別した変異についてはGatewayシステムによりスプライスアッセイ用ベクターへの挿入を簡便に行うことができ、培養細胞を用いたスプライスアッセイも簡便に行うことができた。
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| 今後の研究の推進方策 |
当初想定していたよりも疾患原因候補の同定からスプライスアッセイに適した変異を選別する過程に時間がかかることが分かったので、まず候補の数を増やすために継続して行っている遺伝性網膜疾患患者の全ゲノム解析結果の判定に注力する。エキソン上の同義変異によるスプライス異常の可能性については、できるだけ両隣のエキソンまでを挿入できる候補を探す。候補数を十分確保してからプラスミド構築および細胞での実験を行う実験フローにする。
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