| 研究概要 |
オルニチントランスカルバミラーゼ(OTC)欠損症患者の中には思春期以降に初めて発症する症例があるが、我々はこれら症例のOTC遺伝子の解析を行い、本年度、新に、1人のR40H変異をもつ患者を経験した。これまでの研究の結果からは変異酵素の活性の低下には翻訳後のメカニズムが関与していることを明かにしている。そこでR40H,あるいはY55D変異を導入したあるいはしていない野生型cDNAをβ-actinプロモーター支配下に置き、これをサイトメガロウイルスのエンハンサーとともに、プラスミドに挿入して、真核細胞での発現ベェクターを構築した。リポフェクチン法を用いて、培養細胞Cos1細胞に上記プラスミドを導入したところ、共導入した、β-galactosidase発現プラスミドによるβ-galactosidase活性は、cDNAを導入していないプラスミドを導入した細胞、野生型,R40H,Y55D変異cDNAを用いた各実験で、ほぼ同程度の導入効率を示していた、これに対し、OTC活性はcDNAを導入していないものでは67±23.5(nmol/min/mi),野生型では1955±140であるのに対し,R40H変異では670±130,Y55D変異では627±124と低下していた(n=3)、β-galactosidase活性で補正したOTC活性はR40Hでは野生型の約28%,Y55D変異では約野生型の26%に低下していた。活性低下の原因として、翻訳後のメカニズムの関与が想定されるので、細胞調製液を5回凍結融解をくり返し、再びOTC活性を測定したところ、Y55D変異蛋白には変化が認められなかったが、R40H変異蛋白は凍結融解前の約17%,に低下、野生型のOTC活性に、約6%に活性が低下することが、明かとなった。これらの実験により、R40H変異に関しては、翻訳後、特に蛋白質の不安定性が活性低下の原因となっていることが考えられた。
|
