| 研究概要 |
本研究では、昆虫培養細胞を利用した真核生物遺伝子発現クローニングベクター系の開発に必要な基盤技術の確立を目的として、バキュロウイルスベクター発現系についてはウイルスDNAをヘルパーとした発現クローニング用プラスミドベクターの構築、また、ショウジョウバエS2細胞発現系については、ピューロマイシン耐性細胞(pac)を同時発現する発現クローニング用ブラスミドベクターの構築を行い、以下の知見を得た。
1. バキュロウイルスベクターに関しては、昨年度構築した発現クローニングベクターpBM/Hpaと野生型ウイルスDNAをコトランスフェクションしたカイコ培養細胞BmN4のスクリーニングを行ったが、ウイルス感染細胞の崩壊により発現クローニングを断念せざるを得なかった。
2. S2細胞に関しては、昨年度作製したビューロマイシン同時発現ベクターに緑色蛍光タンパク質遺伝子を導入したpDhspGFP(pac^+)のトランスフェクションによる形質転換細胞S2(+GP)とpDhspGFP(pac^-)とpDhsp(pac^+)のコトランスフェクションによる形質転換細胞S2(+G,+P)の蛍光強度を測定し比較した結果、S2(+GP)の蛍光がS2(+G,+P)を大きく上回っており、同時発現ベクターの使用は発現クローニングにおける検出感度を高めるのに有効であることが判明した。一方、コトランスフェクション法に関しては、大腸菌のβ-ガラクトシダーゼ遺伝子を挿入したpDhspLacZ(pac^-)とpDhsp(pac^+)の量比が1:1あるいは1:10ならば、検出可能な発現量の形質転換細胞が得られるが、1:100ではほとんど検出不可能になるため、一度の発現クローニングにおいてスクリーニング可能なライブラリーの規模は、10〜100クローンの間に設定するべきであると判断された。
今後、これらの知見に基づき、効率的なスクリーニング技術の開発を行う。
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