| 研究概要 |
1)現在我々が保有しているhuman cystatin A cDNAをGST遺伝子の下流につないだ大腸菌発現ベクターを作製し、合成蛋白を作製した。western blot法によりcystatin Aが発現されていることを確認後、GSTカラムおよびトロンビンにて合成cystatin Aを生成した。
次に、合成cystatin A蛋白をトタンスグルタミネース(宝酒造より購入)によりin vitroで反応、反応産物をSDSベージにより検討したところ2から4merのcystatin A産物の形成を認め、cystatin Aがトタンスグルタミネースにより架橋させる確認された。現在、3H-プトレシンと生成cystatin Aを架橋させ、この架橋物をトリプシン処理しHPLCにて分画、架橋部位を同定中である。
2)cystatin Aが実際に辺縁帯に架橋されていることを確認するため、免疫電顕にて検討したところ同じ辺縁帯構成成分のひとつであるinvolucrinと同様に辺縁帯内面に架橋されていることを確認した。
3)cystatin Aの遺伝子調節機構を検討するため、cystatin A遺伝子プロモーター領域をCAT遺伝子につないだレポーターベクターと各種MAPK発現ベクターを正常角化細胞に導入し、プロモーター活性を検討した。dominant negative ERK、MEK1、raf-1を導入するとその活性は上昇した。一方、dominant negative JNKを導入すると逆に抑制された。この現象はアデノウイルスベクターを用いて、蛋白レベルでの検討において確認された。免疫組織学的にERKおよびJNKの局在、活性について検討したところ、活性化ERKは基底細胞に、活性化JNKは有棘層上層から顆粒層にかけて認められた。以上の結果からcystatin AはERK、JNKにより発現はそれぞれ抑制、増強され皮膚においての発現はERKおよびJNKの局在の違いにより調節されていると推定した。また、乾癬においてcystatin Aの発現増強が認められるが、免疫染色、western blotによりERK, JNKが活性化されており、乾癬病態形成に関与していることが示唆された。
4)乾癬治療に使用されている各種の活性化ビタミンD3(タカルシトール、マキサカルシトール、カルシポトリオール)の角化作用に及ぼす影響についてinvolucrinなどの分化マーカーを中心に検討したところ、これらはすべて角化細胞を分化させることが明らかになった。しかし、これらの間にはその作用の違いは認めなかった。
5)活性化ビタミンD3がcystatin Aに及ぼす影響について検討したところ、転写レベルでERKによりその発現が調節されていることが明らかとなった。
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