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本研究では、モルヒネの代謝酵素としてパーオキシダーゼを同定しており、大量精製法の確立にも成功した。しかしながら、本酵素をクローニングするために、部分アミノ酸配列の解析を初めとする種々の検討を行ったが、有益な情報を得るには至らなかった。そこで、ホモロジーを利用して、ケシよりパーオキシダーゼ遺伝子のクローニングを検討した。この結果、3種の遺伝を単離することに成功した。これらのうちいずれの遺伝子がモルヒネの代謝酵素をコードしているのか、まったく不明であったので、これらの遺伝子の大腸菌での発現を検討した。しかしながら、大腸菌に遺伝子を導入したところ、大腸菌の増殖が著しく阻害され、組み換え酵素を誘導することができなかった。そこで、昆虫細胞を用いて、本遺伝子の発現を行った。まず、クローニングした3種の遺伝子をpFASTBacベクターにクローニングした後、コンピテントE.coliに導入することにより、組み替えbacmidを生成させた。次いで形質転換したコロニーをスクリーニングし、組み換えbacmidを抽出して、昆虫細胞に感染させた後、組み換えウイルスの増殖を行った。また、併せて単離した3種の遺伝子の発現抑制したケシを作出するための基礎研究を遂行した。すなわち、ヘアピン型dsDNAをケシ中で発現させることで効率よく内在性遺伝子の発現を抑制することが可能であるので、現在3種の遺伝子のヘアピン型dsDNAの構築を行った。
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