研究課題
1. 抗原提示細胞上に発現するPD-L1の抗原特異的CTL誘導における促進的作用メカニズムの検討CD80/86とPD-L1とを様々な組み合わせで遺伝子導入したK562人工抗原提示細胞に、CMVpp65抗原由来エピトープペプチドをパルスして、CMV既感染健常ドナーの末梢血より分離したCD3陽性T細胞を刺激したのち、テトラマー法を用いてCMV-CTLを染色し、セルソーターを用いてCMV-CTLの分離が可能か検討を行った。CMV既感染健常ドナー中に存在するCMV-CTLは非常に少数であるが検出可能であることが確認できたため、mRNAマイクロアレイを用いた網羅的な遺伝子発現解析に向けて検討を開始した。2. K562にCD80/86とPD-L1を遺伝子導入した人工抗原提示細胞の有効性の検討腫瘍抗原であるWT1およびNY-ESO1のエピトープペプチドを、CD80/86およびPD-L1を様々な組み合わせで遺伝子導入したK562人工抗原提示細胞にパルスして、健常人末梢血から分離したT細胞と共培養を行うことで腫瘍抗原特異的CTLの誘導を行った。どちらの腫瘍抗原においても、CD80/86とPD-L1の両方を遺伝子導入した人工抗原提示細胞を用いた場合にCTLの誘導が可能であることを確認した。3. PD-1の発現を目印にした腫瘍抗原特異的CTLの分離ならびに新たな腫瘍抗原同定の検討急性骨髄性白血病患者の末梢血中に存在するCD8陽性T細胞のうち、PD-1を高発現する分画の分離を行った。この分画にはWT1特異的CTLがより多く含まれており、さらには腫瘍細胞に対する細胞傷害活性をより高く示すことを確認した。
2: おおむね順調に進展している
抗原提示細胞上に発現するPD-L1の抗原特異的CTL誘導における促進的作用メカニズムの検討に関しては、当初計画していたmRNAマイクロアレイを用いた網羅的な遺伝子発現解析までは実施することが出来なかったが、実施に向けての検討を行い、解析を開始する準備は整ってきている。K562にCD80/86とPD-L1を遺伝子導入した人工抗原提示細胞によって、健常人末梢血から腫瘍抗原特異的CTLを誘導することが可能であることを複数の腫瘍抗原で確認できたため、さらなる検討を行う予定である。急性骨髄性白血病患者の末梢血中のCD8陽性T細胞のうち、PD-1を高発現する分画において腫瘍細胞と反応するCTLの検出が可能であることが確認できたため、今後は腫瘍抗原特異的CTLの分離へと進める予定である。
CD80/86とPD-L1とを様々な組み合わせで遺伝子導入したK562人工抗原提示細胞を用いて、CMV既感染健常ドナーの末梢血中に含まれるCMV-CTLを刺激し、刺激後のCMV-CTLをセルソーターを用いて分離して、mRNAマイクロアレイを用いた網羅的な遺伝子発現解析を実施し、さらにはその後の検討を進める。K562にCD80/86とPD-L1を遺伝子導入した人工抗原提示細胞を用いて、他の腫瘍抗原特異的T細胞の誘導を試みる。また、臍帯血を入手して、臍帯血中のT細胞からもK562人工抗原提示細胞を用いて腫瘍抗原特異的CTLの誘導を試みる。その際に、今まではIL-2を用いて誘導を行っていたが、IL-7、IL-12、IL-15などのサイトカインを添加することによる誘導効率の向上に関しても検討を行う。造血器腫瘍患者の検体を引き続き採取し、CD8陽性T細胞のうちPD-1を高発現する分画から腫瘍抗原特異的CTLの分離を進める。その後に、5' RACE PCR法を用いたT細胞受容体の同定や、腫瘍細胞由来のcDNAライブラリーを用いた標的抗原の同定を目指す。
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