| 研究課題/領域番号 |
18K14828
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| 研究機関 | 国立研究開発法人理化学研究所 |
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研究代表者 |
藤田 生水 国立研究開発法人理化学研究所, 生命機能科学研究センター, 基礎科学特別研究員 (80615138)
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| 研究期間 (年度) |
2018-04-01 – 2020-03-31
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| キーワード | 小頭症 / Aspm / 神経幹細胞 / outer radial glia / OSVZ / LGN/Gpsm2 / 細胞分裂 / アポトーシス |
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| 研究実績の概要 |
マウスにおいてoRGを人工的に生じさせるLGN変異下においてAspm変異の小頭症の表現型が重篤になる実験結果を補強するための実験を複数実施した。LGN変異と同様にマウスでoRGを人工的に誘導する方法として知られるmInscの過剰発現を利用し、条件的mInsc過剰発現マウスを作製してAspm変異の影響を調べたところ、LGN変異と同様に大量の細胞死が観察され、重篤な小頭症が引き起こされた。この結果は、oRGの誘導がAspm変異の表現型を強める原因であることを支持するものである。
これまでAspm LGN二重変異マウスにおいては、神経産生期に大量の細胞死を観察していたが、より早い発生ステージにおける二重変異マウスを解析したところ、細胞死の誘導は認められなかった。LGN変異マウスは、あらゆる発生ステージにおいて紡錘体角度を擾乱する一方、早期発生ステージにおいては神経幹細胞の形態的可塑性が強いためにoRGの誘導は起こらない（Fujita, I., et al., 未発表）。この結果からも、Aspm LGN二重変異マウスで細胞死が誘導される原因が、紡錘体制御において両者が機能的に相互作用しているからではなく、oRGの誘導現象と関連することが示唆された。
CRISPR/Cas9システムを子宮内エレクトロポレーション法で導入することにより、フェレットにおいてAspm遺伝子をノックアウトした。de novoノックイン技術により個別の幹細胞からの系譜をラベルし、クローンサイズを解析したところ、Aspmノックアウトによりクローンサイズが減少した。特に、一つのクローンあたりに含まれるニューロン数が激減した。フェレットにおける解析が有効であることが分かった。
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| 現在までの達成度 (区分) |
現在までの達成度 (区分)
2: おおむね順調に進展している
理由
LGN変異やmInsc過剰発現を用いたマウスにおける小頭症の人工的誘導システムの検証実験は順調に行われ、これまでの結果を支持する結果が得られた。また、その前提となるLGN変異マウスの様々な発生ステージにおける性格付けについて、論文を投稿するまでに至っている。
フェレットにおける実験は、対象としてよりふさわしい発生ステージや解析方法の再検討を行う必要があると考えられるが、ノックアウトが十分な効率で行われ、表現型が観察されることが分かったことは大きな進展であった。
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| 今後の研究の推進方策 |
今後は、Aspm LGNノックアウトマウスおよびエレクトロポレーションを施したフェレットを用いたタイムラプス観察を重点的に行い、細胞の振る舞いを詳細に解析する。神経幹細胞特異的に微小管等を可視化するマーカーは、予備実験により選定済みである。さらに、シングルセル解析等によって、細胞死を引き起こす原因を分子・細胞レベルで明らかにする。
また、Aspm以外の小頭症原因遺伝子について、LGN変異マウスもしくはmInsc過剰発現マウスを基にして、CRISPR/Cas9の導入により二重変異マウスを作製し、Aspmと同様の表現型が観察されるか調べる。
本研究課題の開始直後、Aspm遺伝子をノックアウトしたフェレットを詳細に解析した論文（Johnson, et al., Nature, 2008）が発表された。本研究とはやや視点が異なるものの、小頭症が重篤になる原因について本研究とは結論に乖離がある。今後はそれらの検証も並行して実施する。
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| 次年度使用額が生じた理由 |
当該年度においては組織学的解析を中心に行い、シングルセル解析やフェレットを用いた解析等、大きな費用を必要とする実験を次年度に重点的に実施することとしたため。
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