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ヒストンの翻訳後修飾とDNAのメチル化は、エピジェネティック制御における重要な分子機構として位置づけられている。これらの修飾の動態を解明するには、「いつ」「どの細胞で」「どのような修飾が」「細胞核のどの領域で」「ゲノムのどの位置で」生じるかを特定することが必要である。本研究では、CRISPR-Cas系、ヒストン修飾認識ドメイン、およびBiFCの組み合わせを用いて、これらの情報を同時に抽出できるイメージング技術を開発し、この技術を用いて、ヒストン修飾のゲノム上での伝搬速度を単一の生細胞レベルで測定することを目指す。この測定を通じて、個々の細胞間でのヒストン修飾の伝搬速度のばらつき、修飾酵素・リクルート因子・ヒストンリモデラーの変異が単一細胞レベルで伝搬速度にどのような影響を与えるかなど、従来未検証な問いへの答えを得ることを目的とする。
今年度は、昨年度までに開発した、GFP結合タンパク質GFP-clampを用いて蛍光タンパク質の褪色を遅延させる手法をBiFCに対して適用することを試みた。BiFCが観察できる核小体タンパク質ペアNet1-Sir2に対して、GFP-clampを共発現させると、BiFCシグナルの褪色は遅延した。GFP-clampによる蛍光タンパク質の褪色遅延は、BiFCによって再構成された蛍光タンパク質に対しても有効であることが確認された。
また、ゲノムDNAに対する結合効率が高いCRISPR-Cas系を選抜するため、既存のdSpCas9、dSaCas9、denAsCas12aに加えて、自然状態でDNA切断能を持たないCas12cおよびMmCas12mを試用した。mNeonGreenタグを付加したCasタンパク質によるCUP1リピートの可視化を指標とした。これら2種類の非切断性Casを利用したCUP1リピートの可視化は既存の3種類の系よりも低効率であることが分かった。
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