| 研究課題/領域番号 |
23K06600
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| 研究機関 | 東京理科大学 |
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研究代表者 |
小園 晴生 東京理科大学, 研究推進機構生命医科学研究所, 准教授 (80287482)
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| 研究期間 (年度) |
2023-04-01 – 2026-03-31
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| キーワード | MHC / ユビキチン / 制御性T細胞 |
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| 研究実績の概要 |
免疫応答は外来微生物由来の物質に対して起こるし、自己抗原に対しても起こる。免疫応答の昂進と抑制という二つの拮抗する制御の調和は、健康な生活を送るうえで欠かせないものとなっている。Ｔ細胞はエフェクターとして種々の機能を持つが、抑制性の制御性Ｔ細胞(T-reg)にもなり得る。どちらの機能が優勢になるかで自己免疫応答や、ガン細胞への攻撃の強弱が決まる。樹状細胞(DC)は抗原提示を介してT細胞のタイプを変化させることのできる細胞であり、conventional DC(cDC)とplasmacytoid DC (pDC)の2つに分けることができる。cDCは活性化すると強力にエフェクターT細胞を活性化するのに対して、pDCは活性化しても免疫抑制に働くことが多い。cDCもpDCもいたるところに存在するため、その微妙な構成の違いが免疫の昂進か抑制を決めると考えられる。しかしながらpDCが如何にして抑制的機能を発揮するかはよく解っていない。pDCは活性化されても常時ユビキチンリガーゼMARCH Iを発現することが知られており、そこがcDCと大きく異なることである。すなわちTLR刺激においてcDCではMARCH I発現を抑制し、pDCではTLR刺激下でもMARCH Iを発現し続ける。我々はユビキチン化MHCIIによる抗原提示はT-regを誘導し、免疫抑制に働くという仮説のもとに研究を行い、遺伝的にユビキチンを連結させたMHCIIを持つAPCによる抗原提示が実際T-regを誘導することを示すことができた。
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| 現在までの達成度 (区分) |
現在までの達成度 (区分)
2: おおむね順調に進展している
理由
抗原提示におけるMHCIIのユビキチン化の影響を調べるためにはMARCH I KOやユビキチン化部位であるK225をRに変化させたK225Rマウス由来の細胞では、ユビキチン化の影響を調べることは難しい。Mellmanらによるとユビキチン差の長さによりMHCIIの局在が決定されるからである。ユビキチンが1－2個(Ub1, Ub2)の場合MHCIIは細胞表面に局在し、多くなるにつれ細胞内小胞に存在する。そこで我々はユビキチンが1個から4個付いたMHCIIコンストラクトを作りMHCIIを発現しないB細胞株に導入した。それを用いて1分子X線解析(Diffracted X-ray Blinking: DXB)による解析により分子動態の差を見出した。また、可溶性LAG-3分子を作製し、その結合がユビキチンの長さに依存して逆比例することを見出した。さらに、2D2マウス由来のT細胞をユビキチンの個数の異なるMHCIIを発現するAPCで刺激した結果、Ub1及びUb2ではIFN-を出すエフェクターＴ細胞は誘導されず、Foxp-3を発現するT-regが優先的に誘導されることが明らかになった。これら結果により、当初の予定を達成した。
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| 今後の研究の推進方策 |
2023年度は一定の個数のユビキチンに限定したMHCII発現細胞の作製、ユビキチン化による構造変化の解析、T-regの誘導実験まで行った。しかしながら微妙な強さのT細胞シグナルをリン酸化タンパク質の増減で検出するのは難しかった。2024年度は、どのような違いがTCRに伝わるか検証するため、可溶性TCRを作り、TCRのAPCへの結合がどのように変化するかを検討し、MHCIIのユビキチン化がTCRとの会合に影響を与えるかを検討する予定である。
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| 次年度使用額が生じた理由 |
MHCIIのユビキチン化により同じペプチドを結合したMHCIIでもT細胞に異なるシグナルを送りその分化に影響を与えるという結論を得ている。それを確認するためにはTCRからのシグナル解析が重要であると考えたが、予備的実験結果はその解析が一筋縄ではいかないことを示していた。そこで戦略を練り直し、まずTCRのユビキチン化MHCIIに対する親和性を測定し、その後にシグナル解析を行うことが妥当であるという結論を得た。実験的に最も経費を必要とするものがTCRからのシグナル解析である。そこで次年度にその費用を送り解析ができるように予定したものである。
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