研究課題
アセチル化修飾を受けることを明らかにしている非ヒストンタンパク質の中で、ヒトRAD52タンパク質のアセチル化修飾の役割にについて、さらに詳細に研究した。これまで、細胞内でのRAD52のアセチル化の役割を明らかにするために、CMVプロモーターによって発現が誘導されるRAD52の安定発現株を用いた解析をしてきた。タンパク質の発現量を、内在性の遺伝子発現のレベルに近づけて解析するために、CRISPR-Cas9法のゲノム編集によりRAD52のアセチル化部位変異遺伝子が本来のプロモーターにより発現するノックイン細胞を作製した。ノッイン細胞を用いてRAD52の細胞内局在を調べた結果、これまでの実験結果の通り、アセチル化されないRAD52変異タンパク質は、最初はDNA二重鎖切断(DSB)部位に集積するが、DNA修復が不完全な状態な状態で、途中でDSB部位から解離した。また、RAD51の局在をタイムコースで調べた結果、アセチル化されないRAD52変異タンパク質発現細胞では、RAD51も一度はDSB部位に局在していたが、その後途中でDSBから解離することが明らかになった。相同組換え修復の程度を定量的に調べることができるDR-GFPアッセイ用の細胞について、RAD52のノックイン細胞を作製して、相同組換え修復におけるRAD52のアセチル化の影響を調べた。その結果、相同組換えに関するこれまでの他の実験結果と同様に、このアッセイにおいても、アセチル化されないRAD52発現細胞では、相同組換え修復が阻害された。さらに、酵母two-hybrid法により、RAD52のアセチル化が、RAD51やRPAとの相互作用制御に関わることを明らかにした。これは、様々な反応ステップを必要とする複雑な相同組換え修復において、RAD52が様々な役割を果たすために必要であると考えられる。
29年度が最終年度であるため、記入しない。
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